摘要
临床特征.
过氧化物酶体生物发生缺陷病(Peroxisome biogenesis disorders,PBD)或 Zellweger综合征谱系(Zellweger syndrome spectrum,ZSS)是一类疾病的连续体,主要包括三种表型 —— 最严重的Zellweger综合征(Zellweger syndrome,ZS); 新生儿肾上腺脑白质营养不良(neonatal adrenoleukodystrophy,NALD);和病情最轻的婴儿型Refsum病(Infantile Refsum Disease,IRD)—— 此分型方法在这类疾病的生化和分子基础被完全阐明之前就已经被描述了。PBD和ZSS患者常因在新生儿或稍晚的儿童期出现临床症状而就诊。在新生儿期,受累的 儿童表现为肌张力低,喂养困难,特殊面容,癫痫发作和肝脏囊肿伴肝功能异常。可伴有髌骨或其他长骨点彩状(点状软骨发育不良)改变。ZS婴儿病情严重,一般死于婴儿期,不会有任何发育进展。年龄稍长的儿童有视网膜营养不良,感音神经性耳聋,肌张力低伴发育落后,以及肝功能异常。NALD和IRD的临床过程因人而异,可能包括发育落后,耳聋,视力受损,肝功能异常,发作性大出血,和颅内出血。一些患儿可能肌张力极低,但另一些可能可以学会走路和说话。病情一般会缓慢进展。
诊断/实验室检查.
PBD, ZSS可以由生化检测明确诊断。血和/或尿的生化检测异常必须通过培养的成纤维细胞进一步明确。血浆极长链脂肪酸(very-long-chain fatty acid,VLCFA)水平是最常用,最有效的初筛方法。C26:0和C26:1水平以及C24/C22和C26/C22比值能直接反映过氧化物酶体脂肪酸代谢异常。12个不同PEX基因(PEX1,PXMP3 [PEX2],PEX3,PEX5,PEX6,PEX10,PEX12,PEX13,PEX14,PEX16,PEX19,和PEX26)的致病突变可以导致PBD,ZSS。这些PEX基因编码了peroxin蛋白,后者在过氧化物酶体的组装过程中是必须的。PEX1基因的致病性变异是PBD, ZSS最常见的致病原因, 在68% 受累的 患者中可检测到该基因突变。
处理.
对症治疗:主要是对于症状的治疗,可能包括:胃造口术以提供足够的热量,助听设备,婴儿期去除白内障,眼镜,补充维生素,初级胆汁酸治疗胆汁淤积,抗癫痫药物,监测可能的高草酸尿。
监测:每年进行听力和眼科检查,监测凝血因子和肝功能。
需避免的物质/环境:牛奶产品中有植烷酸,需尽量减少摄入。
遗传咨询.
过氧化物酶体生物发生缺陷病,Zellweger综合征谱系以常染色体隐性遗传 方式遗传。根据定义,每个受累的患者的兄弟姐妹有25%的概率为患者,50%的概率为无症状携带者,还有25%的概率既不是患者也不携带致病突变。如果已明确先证者的致病突变,可以检测家系中其他亲属致病突变的携带状态,也可以对存在风险的妊娠进行产前诊断。可以用生化检测来进行产前诊断,但必须首先确定家系先证者成纤维细胞培养可检测出生化异常,因为体液或肝脏检测出来的生化缺陷有可能无法在培养的细胞中检测出(一种被称为"过氧化物酶体嵌合"的现象)。
GeneReview 范围
过氧化物酶体生物发生缺陷病,Zellweger综合征谱系:包括表型 |
---|
|
对于同义词和过时的名词可参考术语。
诊断
检测
生化检测. 生化检查可以明确患者是否患有PBD, ZSS。
用于PBD诊断的生化分析已在表 1中总结。
血浆极长链脂肪酸(very-long-chain fatty acid,VLCFA)水平的检测是最常用和最有效的初筛方法。C26:0和C26:1水平以及C24/C22和C26/C22比值能直接反映过氧化物酶体脂肪酸代谢异常。VLCFA血浆浓度升高的程度在不同患者中各异,在小部分患者中仅轻度升高。
这些指标中如果只有1项或2项升高,必须进一步检测,可能需要在空腹标本中重复该检测或者采用表 1中其他的检测方法。
Table 1.
PBD, ZSS的特殊生化检查
复合物 | 检测 | 阳性结果 | 检测的局限性 |
---|---|---|---|
极长链脂肪酸(Very-long-chain fatty acids,VLCFA) | 血浆浓度 | C26:0 和 C26:1血浆浓度升高; C24/C22 和C26/C22比值升高 1 | 非空腹样本,溶血样本,或生酮饮食个体的样本可能会出现假阳性结果。RCDP患者中VLCFA水平正常。 |
植烷酸和降植烷酸 2 | 血浆浓度 | 植烷酸和/或降植烷酸浓度升高 | 只有植烷酸摄入过多时才会出现支链脂肪酸堆积。因此植烷酸和降植烷酸水平在一个PBD新生儿中是正常的。 |
缩醛磷脂 | 红细胞膜浓度 | 明显降低的C16和C18缩醛磷脂水平 (可能) | 红细胞缩醛磷脂水平可能随着年龄升高。不是所有PBD新生儿的缩醛磷脂水平降低。 |
高脯氨酸 | 血浆/尿液浓度 | 高脯氨酸水平在血浆和尿液中均升高 | 新生儿尿液中高脯氨酸水平明显增高,随年龄逐渐下降。 3 |
胆汁酸 | 血浆/尿液浓度 | THCA和DHCA中间产物累积 | 一些缺陷可能不明显。 |
RCDP = 肢根型点状软骨发育不良
DHCA = dihydroxycholestanoic acid,二羟基胆甾烷酸
THCA = trihydroxycholestanoic acid,三羟基胆甾烷酸
- 1.
LDL和HDL血浆水平低可能引起假阴性结果。在一个LDL和HDL血浆水平低但没有过氧化物酶体脂肪酸代谢障碍的人,血浆特殊的脂肪酸 (C22:0, C24:0, C26:0, 等)明显低于正常水平。在有过氧化物酶体脂肪酸代谢障碍且LDL和HDL水平很低的人中,没有明显的C26:0 和 C26:1升高,但有中度的C24/C22 和 C26/C22 比值升高。
- 2.
这项分析一般包括在VLCFA检测中。
- 3.
高脯氨酸检测是VLCFA和红细胞缩醛磷脂水平等更明确的生化指标的辅助检查。高脯氨酸升高可以在 维生素B6依赖性癫痫发作 [Plecko et al 2000]和神经运动落后但其他过氧化物酶体代谢产物水平正常的个体中检测到 [Baas et al 2002]。因此,单纯高脯氨酸血浆水平升高并不能证明存在原发性过氧化物酶体代谢缺陷。
过氧化物酶体 嵌合. 在理解上述生化检测结果时需考虑的一个问题是过氧化物酶体嵌合。用于描述氧化物酶体嵌合的术语尚未建立,但是数据支持2个主要亚型。1型和2型氧化物酶体嵌合可能在同一个个体中被观察到。
- 1型. 同一个体中,血液、培养的成纤维细胞或肝脏组织(或其他组织)的生化和细胞检测结果不一致。因此,成纤维细胞VLCFA水平正常时,血浆VLCFA水平可能升高。1型过氧化物酶体嵌合曾在PEX6缺陷患者中被报道 [Pineda et al 1999, Depreter et al 2003]。更近的文献表明,当成纤维细胞在37℃培养,PEX12缺陷患者和 p.Ser320Phe纯合子表现为1型嵌合,但当成纤维细胞在40℃培养,过氧化物酶体组装的缺陷可以用免疫细胞化学的方法检测出 [Gootjes et al 2004]。
- 2型. 同一组织标本或从同一个体中获取的培养标本中,邻近细胞过氧化物酶体基质蛋白输入有差异。特别是一些成纤维细胞可能输入过氧化氢酶或其他PTS1和PTS2蛋白,但是其他成纤维细胞不输入。1-10%的肝细胞的过氧化物酶体结构与大多数肝细胞不同。2型过氧化物酶体嵌合在有更轻 表型 且携带PEX1, PXMP3(PEX2)和PEX6 致病突变的患者中被观察到 [Pineda et al 1999, Shimozawa et al 2000, Weller et al 2000]。
互补分析. 互补分析可以帮助推测致病 基因。经典的互补分析依赖于体细胞杂交及生化检测 [Moser et al 1995] 或 cDNA 互补分析及随后的免疫细胞化学分析。
分子遗传学检测
基因. 12个不同PEX基因(编码peroxin或者在正常过氧化物酶体组装中必须的蛋白)的致病性变异被证实可导致 PBD, ZSS (表 2) [Gould et al 2001, Matsumoto et al 2003, Shimozawa et al 2004]。
其他位点. 目前还没有证据表明其他PEX 基因突变可以导致 ZSS。 虽然 Ebberink et al [2011] 曾报道过,在 613个 受累的 患者的成纤维细胞系中,100%可检测出 致病性变异 ,分布在PEX1, 2, 3, 5, 6, 10, 12, 13, 14, 16, 19, 和 26基因上,但仍不能排除可能存在现有检测方法无法检测到的其他基因的致病性变异,后者可能导致轻型或不同的生化和临床表型。
临床检测
PEX1 突变是PBD, ZSS最常见的原因, 在大约68%的 受累的 患者中可检测到。已发现2个常见的PEX1致病突变:p.Ile700TyrfsTer42(在 外显子 13) 和 p.Gly843Asp(在外显子15)。大约在 80%的PEX1 基因突变个体中可检测到这2个突变之一 [Collins & Gould 1999, Walter et al 2001, Maxwell et al 2002]。
- 通过对PEX1的 编码区 及相关剪切突变位点的序列分析,可以检测到常见的致病性变异和所有其他致病突变。
- 外显子13和15(分别包含常见的致病突变 p.Ile700TyrfsTer42 和 p.Gly843Asp)的序列分析可以检测出略大于50%PBD, ZSS病人的 致病性变异 [Gould et al 2001, Steinberg et al 2004]。
PEX6, PEX26, PEX10, PEX12
- 加上PEX1缺陷,大于 90% 的 受累的 患者可以在这5个PEX 基因中找到致病性变异。PEX1外显子13和15,PXMP3(PEX2)外显子4,PEX10外显子4和5,PEX12 外显子2和3,以及PEX26 外显子2和3的缺陷占了所有PBD, ZSS致病性变异的大约72% [Steinberg et al 2004]。曾有人报道过反复出现的致病性变异,包括日本人群中 PEX10 基因的 c.814_815delCT 突变。
PXMP3(PEX2), PEX3, PEX5, PEX13, PEX14, PEX16, PEX19
- 序列分析. PXMP3 (PEX2), PEX3, PEX5, PEX13, PEX14, PEX16, 和 PEX19 的致病性变异大约只占了所有PBD, ZSS患者致病性变异的6%。
Table 2.
过氧化物酶体生物发生缺陷病,Zellweger综合征谱系的分子遗传学检测总结
基因 1 | 在PBD, ZSS中该基因突变所占百分比 | 检测方法 | 被检测到的致病突变 2 | 用该检测方法检测到致病突变的概率3 |
---|---|---|---|---|
PEX1 | 68% 4; 58% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
外显子 13,15,18 & 19 8, 9 的序列分析 4 | 序列突变 | 100% 对选定外显子的已知突变 | ||
PEX6 | 10.7% 4; 16% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
外显子 1 8, 9的序列分析 6 | 选定外显子的序列突变 | 100% 对选定外显子的已知突变 | ||
PEX26 | 6.6% 4; 3% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
外显子 2 和 3 8, 9的序列分析 6 | 选定外显子的序列突变 | 100% 对选定外显子的已知突变 | ||
PEX10 | 4.6% 4; 3% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
外显子 4 和 5 8, 9的序列分析 6 | 选定外显子的序列突变 | 100% 对选定外显子的已知突变 | ||
PEX12 | 4.1% 4; 9% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
外显子2 和 3 8, 9的序列分析 6 | 选定外显子的序列突变 | 100%对选定外显子的突变7 | ||
PXMP3 (PEX2) | 1% 4; 4% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
一个编码外显子 10的序列分析 6 | 选定外显子的序列突变 | 100%对选定外显子的突变 7 | ||
PEX3 | 1.5% 4; <1% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
PEX5 | 1.5% 4; 2% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
PEX13 | 1% 4; 1% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
PEX14 | 0.5% 4, 11; <1% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
PEX16 | 0.5% 4; 1% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
PEX19 | 0.5% 4; <1% 5 | 所有编码外显子的序列分析 6 | 序列突变 | ~95% 7 |
- 1.
见 表 A. 基因和数据库 可找到对应的 染色体位点 和蛋白。
- 2.
见 分子遗传 获取更多等位基因突变的信息。
- 3.
- 4.
根据Kennedy Krieger研究所对于197个生化检测确诊并进行互补分析的 PBD, ZSS患者的经验(除了PEX14,见脚注11)。
- 5.
Ebberink et al [2011] (613 个患者成纤维细胞系的研究)。
- 6.
- 7.
根据估计,大片段缺失,启动子或内含子深部的致病突变可能被忽略,但是这些类型的致病突变在PBD, ZSS中并不常见。
- 8.
外显子测序检测到致病突变的概率可能会因实验室而不同。
- 9.
测序分析PEX1 外显子 13, 15, 18, 和 19; PXMP3 (PEX2) 外显子 4; PEX6 外显子1; PEX10 外显子 4 和 5; PEX12 外显子 2 和 3; 以及 PEX26 外显子 2 和 3 可以检测到大约 79% 的 PBD, ZSS 致病突变 [Steinberg et al 2004]。
- 10.
PXMP3 只有一个编码外显子。
- 11.
PEX14 的致病突变在一个PBD, ZSS患者中被检测到 Shimozawa et al [2004];因此, 当Kennedy Krieger研究所的研究还在进行时,PEX14 不是一个已经被发现的互补群。
检查策略
为了明确或建立 先证者 的诊断. 在血和/或尿里检测到的生化异常必须在培养的成纤维细胞中证实。
在一些个体中,可能需要肝脏活检。
PEX 分子遗传学检测 检测流程. 为了避免互补分析(需要培养成纤维细胞),建立了2种稍有不同的检测PEX外显子的流程:
- PEX1外显子13, 15, 和 18, PEX2 外显子 4, PEX6 外显子 1, PEX10 外显子 3-5, PEX12 外显子 2 和 3, 以及 PEX26 外显子 2 和 3 的 序列分析 检测出致病性变异的概率是 79% [Steinberg et al 2004].
高危亲属携带者检测 需要事先知道该家系中的致病性变异。
注意:在 常染色体隐性遗传 疾病中,携带者是杂合子,不会发病。
产前诊断和 植入前遗传诊断 (PGD) 用于高危妊娠,需要事先知道家系中的致病性变异。通过生化检测来进行产前诊断是可能的;理论上, 需要首先在 受累的 家系成员的培养的成纤维细胞中确认存在生化缺陷。
临床表现
临床描述
过氧化物酶体生物发生缺陷病(Peroxisome biogenesis disorders, PBD)或Zellweger综合征谱系(Zellweger syndrome spectrum,ZSS)被定义为一种疾病的连续体,在其分子和生化机制被阐明之前即被定义为三种表型:Zellweger综合征 (Zellweger syndrome,ZS),新生儿肾上腺脑白质营养不良(neonatal adrenoleukodystrophy,NALD)和 婴儿型Refsum病(infantile Refsum disease,IRD) [Gould et al 2001]。
所有的过氧化物酶体组装缺陷病都是很严重的疾病,经常导致儿童期死亡。ZS是最严重的,而IRD是三种表型中最轻的。这三种标签所归纳的症状在面对未明确诊断的病人和对其家庭作遗传咨询时仍旧有用,但是不需要过分强调把某一个 受累的 患者归为某一种类型。因为表型多变, PBD, ZSS 患儿一般在新生儿期或之后的儿童期引起临床注意。症状轻时可到成年期再诊断。
在新生儿期,受累的 儿童肌张力低,并由此导致喂养困难。新生儿癫痫多见。肝功能异常可能明显,表现为新生儿黄疸,并且肝功能检查升高。不同的颅面特征包括面部扁平,前囟增大,颅缝增宽,宽鼻梁。在受累严重的儿童,可能观察到髌骨和其他长骨点彩状(点状软骨发育不良)改变。
年龄稍长儿童 表型为肾脏发育不良,神经性耳聋,发育迟缓伴肌张力低,和肝功能异常。患儿可能首先因为听力筛查未通过而被发现。视力问题发生时间和严重程度不一,但同时存在上述2个问题的儿童应该考虑PBD,ZSS。 一些临床诊断为新生儿肾上腺脑白质营养不良的病人可能有暂时的豹斑色素性视网膜病 [Lyons et al 2004]。肝功能异常可能因为严重的维生素K反应性凝血功能障碍导致的出血发作而被首次发现。年龄较大儿童还可能出现肾上腺功能不全。
成年期发病的PBD, ZSS非常少见,但也有以感觉神经缺陷为主要症状的成年患者 [Moser et al 1995]。见PEX6缺陷的病例 (遗传相关疾病)。
Zellweger 综合征 以新生儿期发病的严重肌张力低,特征性面容,癫痫,喂养困难,肝囊肿伴肝功能异常为主要表现,伴有点状软骨发育不良。有这些症状的婴儿明显受累,常死于婴儿期,无发育进展。死亡一般继发于进行性呼吸暂停或呼吸道感染。
新生儿肾上腺脑白质营养不良和婴儿Refsum病 可能出现在新生儿期,但是一般稍后才由于发育落后,耳聋或视力受损而被发现。肝功能异常可能导致维生素K依赖性凝血功能异常。患儿可能因为大出血而被发现,有些儿童在生后第一年出现颅内出血。临床过程不一,有些患儿可能有严重肌张力低下,但也有很多可以学会说话和走路。听力和视力的损伤经常随着时间缓慢进展。一些患儿可能出现进行性髓鞘变性(一种脑白质营养不良),后者可引起之前获得的功能退化并最终导致死亡。 可以活过第一年并且病程无进展的患儿77%可以活到学龄期 [Poll-The et al 2004]。
神经影像. 核磁共振可发现低髓鞘化,皮质脑回异常,和生发层溶解性囊肿,高度提示 Zellweger 综合征 [Barkovich & Peck 1997]。
更新的基于少量PBD, ZSS病人的研究表明,弥散加权成像和弥散张量成像比标准成像能更清楚观察到脑白质病变 [ter Rahe et al 2004]。
基因型-表型相关性
2个最常涉及的基因(PEX1 和 PEX6)的致病性变异可以导致所有的临床表型。PEX10,PEX12 和PEX26基因的致病性变异也可以导致患者出现不同的临床表型。
PEX3, PEX16 和 PEX19 的致病性变异,仅在1-2个患者中被发现,和更严重的 表型(ZS)相关。这3个基因的致病性变异可以导致一种能被免疫细胞化学分析检测到的细胞表型。在这些患者的细胞系中,过氧化物酶体膜的形成完全缺失。
生化 表型 和PEX 致病性变异 之间没有直接的关系。因此,不可能仅通过生化表型来直接找到可能的候选 基因。但是,有一篇报道提示,2种生化指标 (DHAP-AT 和 C26:0 β-氧化活性) 可以预测 PBD, ZSS [Gootjes et al 2002] 患儿的生存率。
基因型,细胞 表型(例如过氧化物酶体基质蛋白的输入),和临床表型 [Moser 1999] 之间可能存在着普遍联系:
- 移码突变和更严重的过氧化物酶体组装缺陷相关,可以导致较严重的临床表型。
- PEX1 等位基因 p.Ile700TyrfsTer42 和 p.Gly973AlafsTer16 的复合杂合子也会导致严重表型。这些患者的细胞表型表现为较严重的过氧化物酶体基质蛋白组装缺陷。
- 与之相反, PEX1 等位基因 p.Gly843Asp 与更轻的临床表型相关,过氧化物酶体基质蛋白组装接近正常。
- PEX1 p.Gly843Asp 纯合子目前为止与更轻的表型相关,经常是 IRD, 但有时是 NALD。拥有PEX1 p.[Gly843Asp]+ [Ile700TyrfsTer42]复合杂合突变的同一家系不同成员临床表型可不同,提示存在其他影响发育和生存的因素 [Poll-The et al 2004]。
术语
过氧化物酶体生物发生缺陷病(Peroxisome biogenesis disorders, PBD)可以被分为2个亚型: Zellweger 综合征谱系和短肢型点状软骨发育不良谱系,RCDP1 是后者的一个亚型。
RCDP1患者有PEX7的致病性变异,PEX7基因编码一种识别含有过氧化物酶靶向信号2的过氧化物酶体酶的受体。虽然RCDP1患者有基质蛋白输入的缺陷,在这一点上与过氧化物酶体组装缺陷一致,但是他们的生化,细胞和临床 表型 与PBD, ZSS不同。(更详细的描述见 肢端型点状软骨发育不良。)
PBD, ZSS也被称为脑肝肾综合征,全身性过氧化物酶体病,Zellweger综合征,新生儿肾上腺脑白质营养不良,或者婴儿Refsum病 (又被称为婴儿植烷酸氧化酶缺陷)。一些后来表现为 PBD, ZSS的患者可能一开始表现为高甲基哌啶血症。
注意: 婴儿Refsum病和 Refsum病 是不同的疾病,有不同的分子基础(见 鉴别诊断)。
发病率
PBD, ZSS的发病率估计是1:50,000 [Gould et al 2001]。
这些疾病在全世界均有发病,但不同人群中发病率各异。日本最主要的过氧化物酶体病诊断中心在20年间仅诊断了31例日本患者,因此其新生儿发病率估计为1:500,000 [Shimozawa et al 2003]。
遗传相关的(等位基因的)疾病
PBD, ZSS 的表型谱很宽,一些 受累的 患者症状较轻,主要是感觉缺失和/或发育迟缓。
一个因患有 PBD, ZSS在17个月时去世的男孩的父母都有色素性视网膜炎和神经性耳聋,开始考虑其患有 Usher 综合征1型 或 Usher 综合征2型。但是,生化分析证实这对父母血浆 VLCFA 和支链脂肪酸的水平升高,有β-氧化缺陷和plasmalogen 合成障碍,在培养的成纤维细胞中有过氧化物酶体组装缺陷。这对父母和其 受累的 儿子的互补研究均提示PEX6缺陷。患儿的PEX6 致病性变异为 p.Thr572Ile 和c.2094+2T>C。父亲为 纯合性 变异p.Thr572Ile ,而母亲的PEX6 等位基因 有 复合杂合 变异,一个等位基因上是剪切突变 c.2094+2T>C, 另一个等位基因上有2个 错义 突变: p.Ala809Val 和 p.Ile845Thr [Raas-Rothschild et al 2002]。
鉴别诊断
鉴别诊断因发病年龄和最主要的临床表现而不同。
PBD, ZSS 在新生儿期容易与其他引起肌张力减低的情况相混淆,例如唐氏综合征,其他染色体异常,Prader-Willi 综合征,脊肌萎缩症,先天性强直性肌营养不良1型,和其他先天性肌病,例如 X连锁肌小管肌病 和 多微小轴空肌病。
年龄较大儿童最开始可能考虑 Usher综合征1型 或 Usher 综合征2型 以及其他会引起神经性听力损伤和色素性视网膜炎的疾病,Leber 先天性黑矇 [Lambert et al 1989, Michelakakis et al 2004](也见于 遗传性听力损伤和耳聋概述 和 色素性视网膜炎概述),Cockayne 综合征,或 先天的 感染。脑白质营养不良可能由溶酶体贮积病引起,包括 Krabbe病 和 异染性脑白质营养不良(见 Arylsulfatase A 缺乏)或者 线粒体病(见线粒体病概述),这些可能是首先考虑的诊断。
至少15%的有ZSS临床 表型 并且血浆VLCFA浓度升高的患者被发现存在过氧化物酶体β-氧化中某一个酶缺陷(例如, D-双功能蛋白缺陷或酰基辅酶A氧化酶缺陷),并且没有 PEX 基因 的 致病性变异。这些疾病的诊断可以通过生化检测实现 (表 3).
- D-双功能蛋白缺陷更常见也更严重, 经常以出生后严重的癫痫为表现,因此与ZS更相似。
- 酰基辅酶A氧化酶缺陷生化和临床表型相对较轻,总体上其临床过程更像 NALD(见 Watkins et al [1995] 比较两者异同)。
区分过氧化物酶体组装缺陷和过氧化物酶体代谢中单个酶缺陷很重要。有些患儿可能被误诊为 X-连锁肾上腺脑白质营养不良 或 成人型 Refsum 病。可能是由于对这些疾病认识不足所引起的。
- X-连锁肾上腺脑白质营养不良以血浆VLCFA水平升高,而没有过氧化物酶体疾病其他异常为表现。患有此病的男性在发病之前一般发育正常。
血浆VLCFA水平升高提示过氧化物酶体脂肪酸代谢障碍,可能与四种主要的疾病相关: (1) PBD, ZSS;(2) 过氧化物酶体β-氧化中涉及的单个酶缺陷(a single-enzyme deficiency,SED),例如D-双功能蛋白 (D-BP) 或酰基辅酶A氧化酶(AOx)缺陷 [Watkins et al 1995];(3) X-连锁肾上腺脑白质营养不良(X-ALD)或肾上腺脊髓神经病(AMN),由ABCD1基因的致病性变异引起;和 (4) CADDS,一种 关键区域 包括 ABCD1 和BAP31基因的邻近基因缺失综合征 [Corzo et al 2002]。X-ALD中没有C26:1血浆水平升高,但是 CADDS 患者 VLCFA 水平特点与PBD患者相似。
- X-ALD 和 AMN 在临床上与这类疾病中的其他病不同 (见X-ALD),其生化结果可以将其区分。与此相反,PBD, SED, 和 CADDS 的临床表型重合,只能通过进一步的血液检查及成纤维细胞培养来明确 (表 3)。在一个有血浆VLCFA水平升高以及 表型 与PBD一致的患者, 用皮肤活检的细胞建立一个成纤维细胞系,有利于完善诊断。PBD患者不一定有典型的生化表型。因此,表3 所列所有检查可能有助于鉴别 PBD和 SED。在一些PBD, ZSS患者中,由于生化表型不典型,可能需要互补研究和/或分子遗传学分析来辅助明确诊断。有时,当血或尿中检查出的酶缺陷在培养的成纤维细胞中没有观察到时,其他点的皮肤活检分析或者肝脏活检也许有助于过氧化物酶体嵌合的诊断。
Table 3.
鉴别 PBD, ZSS 和单个酶缺陷或CADDS的检查
PBD, ZSS | 单个酶缺陷 | CADDS | |||
---|---|---|---|---|---|
D-双功能蛋白缺陷 | 酰基辅酶A氧化酶缺陷 | ||||
血浆水平 | VLCFA | 升高 | 升高 | 升高 | 升高 |
植烷酸 | 正常到升高 | 正常到升高 | 正常 | 正常 | |
胆汁酸 | 出现THCA/DHCA | 出现THCA/DHCA | 正常 | 水平升高 | |
尿液水平 | 高脯氨酸 | 正常到升高 | 正常 | 正常 | 正常 |
环氧双羧酸 | 存在或缺失 | 存在或缺失 | 存在或缺失 | 缺失 | |
胆汁酸 | THCA/DHCA 出现 | THCA/DHCA 出现 | 正常 | 水平升高 | |
红细胞膜 | 缩醛磷脂 | 缺乏到正常 | 正常 | 正常 | 正常 |
成纤维细胞, 培养 | VLCFA 浓度 | 升高 | 升高 | 升高 | 升高 |
VLCFA 氧化 | 缺乏 | 缺乏 | 缺乏 | 缺乏 | |
缩醛磷脂合成 | 缺乏到正常 | 正常 | 正常 | 正常 | |
DHAP-AT活性 | 缺乏到正常 | 正常 | 正常 | 正常 | |
ADHAP-S 活性 | 缺乏到正常 | 正常 | 正常 | 正常 | |
植烷酸氧化 | 缺乏 | 缺乏 | 正常 | 正常 | |
降植烷酸氧化 | 缺乏 | 缺乏 | 正常 | 正常 | |
过氧化氢酶溶解度 | 升高 | 正常 | 正常 | 正常 | |
免疫组化 | 过氧化物酶体结构 | 缺失到增大 & 数量减少 | 增大 & 数量减少 | 增大 & 数量减少 | 正常 |
过氧化氢酶输入 | 缺失到部分缺失 | 正常 | 正常 | 正常 |
DHCA = dihydroxycholestanoic acid,二羟基胆甾烷酸
THCA = trihydroxycholestanoic acid,三羟基胆甾烷酸
DHAP-AT = dihydroxyacetone phosphate-acyl transferase,二羟基丙酮磷酸-酰基转移酶
ADHAP-S = alkyl-dihydroxyacetone phosphate synthase,烷基-二羟基丙酮磷酸合成酶
DLP1 (发动蛋白样蛋白1 基因). 据一篇文献报道,在一个女婴中发现DLP1基因的一个 显性负效 杂合 致病性变异 (p.Ala395Asp),该变异未在其父母中检出 [Waterham et al 2007]。临床表现包括轻度 变形的 面部特征,躯干肌张力减低,腱反射消失,小头,视神经萎缩,生长发育停滞,严重的发育迟缓。生化检查发现轻度升高的血浆VLCFA 和持续性乳酸酸中毒。培养的成纤维细胞的免疫细胞化学检测提示线粒体和过氧化物酶体分裂。
治疗
初诊后评估
要了解一个诊断为PBD,ZSS的患者疾病的严重程度,建议做以下方面评估:
- 喂养
- 听力
- 视力 (眼科综合评估)注意: 视网膜电图(Electroretinogram,ERG)和视野测试对于诊断视网膜营养不良很有用。
- 肝功能
- 神经功能 (可以做头颅MRI和EEG)
- 发育情况
- 可以评估肾上腺功能,因为应激时可能出现肾上腺功能不足
临床表现的治疗
治疗主要集中于对症状的治疗。
喂养和营养. 为了庭护理更容易,受累的 儿童经常需要置胃管帮助摄入充足的热量。没有特殊的代谢饮食。很多患儿可能有不同程度的吸收不良,元素配方奶也许能被更好地耐受。
听力. 有听力损伤的患儿必须使用助听器。 (更多关于治疗的讨论见 遗传性听力损失和耳聋概述 。)
视力. 婴儿早期去除白内障有助于保留视力。需要戴眼镜来矫正屈光不正。
肝脏. 推荐补充维生素K 和其他脂溶性维生素。
肝功能异常可能导致静脉曲张,可以用硬化疗法治疗。
初级胆汁酸治疗可能通过减少胆汁酸淤积而改善肝功能 [Setchell et al 1992]。
神经功能. 必须进行早期干预。
癫痫发作在大约三分之一 受累的 患儿中可观察到。可能需要用标准的抗癫痫药物 (antiepileptic drugs,AEDs)治疗。AEDs类型没有禁忌。虽然用了合适的治疗,但是癫痫发作可能很难控制。
预防原发症状
目前 PBD, ZSS 没有治愈的方法。
预防继发的并发症
长期存活的 受累 患者应该监测高草酸尿,如果发生可能导致肾结石和肾衰。
监测
需要每年评估听力。
建议每年做眼科评估。(虽然视网膜电图对诊断视网膜营养不良有用,但对随访无用,视野检查在随访中更有帮助。)
监测凝血因子和肝脏合成功能。有明显肝功能损伤的患者需要更密切的监测。
常规神经影像检查作用不确定。过氧化物酶体疾病的患者可能有进行性脑白质营养不良。没有有效的治疗方法,但是脑白质改变可以解释认知和/或运动能力的改变。
避免的物质或环境
避免牛奶及其相关副产品,减少对植烷酸的暴露。
在研的治疗
二十二碳六烯酸(docosahexaenoic acid,DHA)曾被提出用于治疗 PBD, ZSS。这个化合物对于大脑和视网膜功能都很重要,在 PBD, ZSS患者中水平低。
- Martinez [2001] 和 Noguer & Martinez [2010] 曾经报道补充 DHA 乙酯能恢复一些患者的 DHA 水平,改善肝功能和视力。特别是那些在生后6个月内开始治疗的患者。
- Paker et al [2010] 对48位 PBD, ZSS 患儿进行了一项双盲安慰剂对照研究,给他们每天补充100 mg/kg 的DHA。在一年的研究期间,没有发现补充DHA 有任何帮助,使用的评价指标是生长和视力。
虽然没有临床试验证实,有轶事证据表明所有用DHA治疗的 PBD, ZSS 患者,可以从补充初级胆汁酸中获益 [Setchell et al 1992]。
搜索 ClinicalTrials.gov 找到更多疾病的临床试验信息。
其他
提倡低植烷酸饮食,主要是由于PBD, ZSS与成人 Refsum 病 有一点相似,后者中植烷酸在体内积累是有害的,治疗方法是限制饮食里的植烷酸。这种治疗的有效性还没有在 PBD, ZSS 中证实。所有婴儿配方奶都是低植烷酸的。
遗传咨询
遗传咨询是一个为患者及其家属提供遗传病的本质,遗传方式及其意义等信息,从而帮助他们作出医疗和个人决定的过程。以下部分讲述了遗传风险评估,以及利用家族史和基因检测结果来明确家族成员遗传情况。这个部分不能涵盖在遗传咨询过程中需要面对的所有的个人,文化,或者种族问题 —ED。
遗传方式
PBD, ZSS 以 常染色体隐性遗传 方式遗传。
家族成员的风险
先证者 的父母
- 杂合携带者是无症状的。
先证者 的同胞
- 根据概念,受累的 患者的每一同胞有25%的概率受累,50%的概率为无症状的携带者,另有25%的概率没有患病也没有携带。
- 已知一位有风险的同胞没有受累,他/她为 携带者 的概率是 2/3
- 杂合携带者无症状。
先证者 的后代
- 一般来说,受累的 患者无法生育。
- 一些临床表型轻的患者可能生育,其后代必然是杂合携带者。
相关遗传咨询问题
家庭计划
- 明确遗传风险,讨论 携带者 状态和产前检查的可行性的最佳时机是在怀孕以前。
DNA 储存 储存患者DNA(特别是从白细胞中提取的DNA)以备将来使用。因为有可能检测方法,我们对于基因,等位变异,和疾病的理解在将来会发展,需要考虑储存 受累的 患者的DNA。
产前诊断和植入前遗传诊断
生化检测
- 一些PBD, ZSS患者培养的细胞中 VLCFA 升高,但是缩醛磷脂合成正常。VLCFA 水平和缩醛磷脂合成可以在培养的CVS和羊水细胞中检测。如果要检测VLCFA水平,细胞生长的条件需要很严格,因此只能在做过数个此类标本的中心进行。文献中曾有假阴性结果的报道[Carey et al 1994, Gray et al 1995]。
- 胆汁酸代谢产物可以在羊水中被定量检测 [Stellaard et al 1991]。
- 绒毛膜绒毛样本的免疫细胞化学分析能用来辅助明确所有细胞有正常的过氧化物酶体形态和过氧化物酶体基质蛋白输入。
- CVS 可以直接用来检测 DHAP-AT(可能有缺陷的缩醛磷脂合成必须的酶之一 [Steinberg et al 1999]),或用来左β-氧化酶的免疫印迹分析 [Wanders et al 1995]。
- 在培养的CVS中通过研究排除母源性细胞污染(maternal cell contamination,MCC)很重要 [Steinberg et al 2005]。因为杂合携带PEX致病突变的个体没有任何生化 表型,MCC会导致 受累的 胎儿的假阴性结果,而不是一个正常胎儿的阴性结果。基于细胞混合实验,笔者估计MCC大于30%才会导致 VLCFA水平或缩醛磷脂合成结果完全正常,虽然也需要同时考虑 先证者 的缺陷程度。
分子遗传学检测. 一旦 受累的 家庭成员的致病性突变已经明确,PBD, ZSS高风险妊娠的 产前诊断 和 植入前遗传诊断 是可行的。
资源
GeneReviews 工作人员挑选了以下的疾病特异性和/或保护支持组织和/或对于患者及其家属有益的登记。GeneReviews 对其他组织提供的信息不负责。对于信息挑选的标准,点击这里。
- 全球过氧化物酶体病基金会 (Global Foundation for Peroxisomal Disorders)5147 South Harvard AvenueSuite 181Tulsa OKFax: 918-516-0227Email: contactus@thegfpd.org
- 神经疾病及中风国家研究所 (National Institute of Neurological Disorders and Stroke,NINDS)PO Box 5801Bethesda MD 20824Phone: 800-352-9424 (toll-free); 301-496-5751; 301-468-5981 (TTY)
- NCBI基因和疾病 (NCBI Genes and Disease)
- 脑白质营养不良联合基金会 (United Leukodystrophy Foundation,ULF)224 North Second StreetSuite 2DeKalb IL 60115Phone: 800-728-5483 (toll-free); 815-748-3211Fax: 815-748-0844Email: office@ulf.org
分子遗传学
在 Molecular Genetics 和 OMIM 表格中的信息可能和 GeneReview中的不一样:其表格中可能包括最新的信息。 - ED.
Table A.
过氧化物酶体生物发生缺陷病,Zellweger综合征谱系:基因和数据库
Table B.
OMIM 中过氧化物酶体生物发生缺陷病,Zellweger综合征谱系的条目 (在OMIM中查看所有内容)
170993 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 2; PEX2 |
202370 | PEROXISOME BIOGENESIS DISORDER 2B; PBD2B |
214100 | PEROXISOME BIOGENESIS DISORDER 1A (ZELLWEGER); PBD1A |
266510 | PEROXISOME BIOGENESIS DISORDER 3B; PBD3B |
600279 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 19; PEX19 |
600414 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 5; PEX5 |
601498 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 6; PEX6 |
601758 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 12; PEX12 |
601789 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 13; PEX13 |
601791 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 14; PEX14 |
602136 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 1; PEX1 |
602859 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 10; PEX10 |
603164 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 3; PEX3 |
603360 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 16; PEX16 |
603867 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 11B; PEX11B |
608666 | PEROXISOME BIOGENESIS FACTOR 26; PEX26 |
分子遗传学致病机制
表 4 中列出的12个基因的致病性变异已知可以导致PBD, ZSS。这些基因编码的蛋白在过氧化物酶体生物发生过程中是必须的,被称作 "peroxins",用来命名这些基因的术语是"PEX" 加上一个数字。一些 peroxins 可能在过氧化物酶体膜的形成中是必须的。但是,大部分已知受累的 患者PEX基因的致病性变异影响的是在过氧化物酶体基质蛋白输入过程中必须的蛋白。
过氧化物酶体: 生物发生和组装. 过氧化物酶体膜的发生,分裂和从其他细胞器输入蛋白至少需要 29 种peroxins。我们对这些peroxins功能的理解很多都源于对多种酵母菌株的研究。目前为止,13 个编码 peroxins的基因的变异被发现与人类疾病有关。膜的生物发生还没有被很好的理解,但是人类的三个PEX 基因(PEX3, PEX16, and PEX19)的变异可以导致过氧化物酶体膜完全缺失 [Ghaedi et al 2000]。剩下的PEX 基因编码的蛋白参与了基质蛋白输入的机制,这个复杂的过程是目前研究的热点。一般来说,过氧化物酶体基质蛋白由核基因编码,在多聚核糖体上翻译。PXR1 (PEX5)编码了一种受体,可以识别含有过氧化物酶体靶向序列1(peroxisomal targeting sequence 1,PTS1)的多种蛋白,PTS1的特征是羧基末端有共同的丝氨酸-赖氨酸-亮氨酸序列( serine-lysine-leucine,SKL)。 PEX7 编码了 PTS2 受体,可以识别少数拥有某种N端模序的基质蛋白。PEX7 的致病性变异与临床表现各异的 RCDP 有关。 两个亚复合体锚定在Pex8p附近,可能与过氧化物酶体膜腔内面关系更密切 [Agne et al 2003]。这两个亚复合物由下列蛋白组成:(1) PEX14, PEX17, 和 PEX13;以及 (2) PEX10, PEX12, 和 PEX2。第一个亚复合体参与 PTS1 和 PTS2受体蛋白及其相关蛋白的停靠,第二个亚复合体是基质蛋白 易位 装置的一部分。相比之下, PEX1 和 PEX6形成的复合体参与了 PEX5 和 PEX7编码的受体的循环利用。酵母菌的异位显性研究提示 PEX1, PEX6, PEX4 和 PEX22 在蛋白输入通路上作用时间晚,可能晚于易位过程 [Collins et al 2000]。 但是,最新研究发现PEX26 编码蛋白可以直接和 PEX1-PEX6 复合体作用。因此,这三种蛋白可能在 PTS1 和 PTS2 蛋白在过氧化物酶体膜上的表达中起到关键作用。
过氧化物酶体: 代谢通路. 很多合成和分解代谢的通路均在过氧化物酶体中发生。β-氧化和缩醛磷脂合成是这里的两个基本通路。过氧化物酶体 β-氧化的酶与线粒体系统不同。直链 VLCFA β-氧化需要极长链酰基辅酶A合成酶,酰基辅酶A氧化酶,D-双功能蛋白 (烯酰辅酶A水合酶和3羟基辅酶A脱氢酶),以及过氧化物酶体β-酮硫解酶。所有这些蛋白都有PTS1 信号,除了过氧化物酶体β-酮硫解酶,后者形式上是以 PTS2信号输入的。这些蛋白在C27胆汁酸的侧链修饰上也起到重要作用。因此,过氧化物酶体β氧化的缺陷可以导致VLCFA支链脂肪酸如降植烷酸和C27胆汁酸水平升高。 胆汁酸和降植烷酸使用了一种特殊的支链酰基辅酶A氧化酶 A,这就解释了为什么其代谢产物在酰基辅酶A氧化酶缺陷时正常。缩醛磷脂合成的最初步骤在过氧化物酶体中发生,其最后的步骤在内质网中完成。磷酸双氢丙酮(Dihydroxyacetone phosphate,DHAP)-酰基转移酶和烷基-DHAP-合成酶分别是 PTS1 和 PTS2 蛋白。
不可能仅通过临床表现,生化特征和细胞表型去判断变异的PEX 基因 。但是,PEX基因缺陷,致病性变异的种类,对过氧化物酶体组装的影响,以及临床严重程度之间有很好的相关性。
线上数据库 www.dbpex.org/home.php 记录了在13个 PEX 基因中发现的与人类疾病相关的致病性变异。致病性变异包括同行评审的论文中报道的和临床实验室提交的。
任何PEX 致病性变异 的影响可以实验评估,这些实验包括培养的成纤维细胞过氧化物酶体的形态以及这些细胞输入含有 PTS1 或 PTS2 信号蛋白的能力。过氧化氢酶经常被用来作为检测 PTS1 输入的标志物,虽然羧基端-SKL的抗体对于一般PTS1输入能力的评价很有价值。β-酮硫解酶,植烷酸辅酶A羟化酶或烷基DHAP合成酶的抗体可以被用来评价 PTS2 输入。PEX3, PEX16, 或 PEX19 基因缺陷的患者很可能没有过氧化物酶体膜残基,可以通过过氧化物酶体膜蛋白(如ALDP或PMP70)免疫染色来检测。与之相比,其他PEX 基因 缺陷的患者如果用过氧化物酶体膜蛋白抗体,可以看到其过氧化物酶体膜。但是,这些过氧化物酶体的结构可能变大或数目减少。特定PEX基因致病性变异的类型可能决定了其对PTS1和PTS2输入的影响。为了评估对于输入的影响,需要检测大量细胞。PTS1或PTS2输入在ZS病人可能完全缺失,但是在临床表现轻的患者中可能只是轻度受损 [Shimozawa et al 1999a]。
在很多PEX基因(PEX6, PEX5, PEX26, PEX1, PXMP3 [PEX2], PEX1)缺陷的成纤维细胞中,细致的免疫细胞化学分析可以发现一个现象,称为“温度敏感” [Imamura et al 1998, Shimozawa et al 1999b, Imamura et al 2000, Ito et al 2001, Akiyama et al 2002, Matsumoto et al 2003]。在PTS1和PTS2输入方面,PEX缺陷的成纤维细胞在 37°C孵育与在30℃孵育相比,可能有更严重的细胞 表型。因为这个现象曾在有 错义 突变的细胞系被描述,有人假设如果细胞孵育在更低的温度,可能变异的蛋白可以达到一个更松弛的构象,或可增进其功能。体外发现的一些可以模拟低温孵育效果的小分子可能有治疗价值。同理,在40°C 孵育细胞可以加重那些本来表现为轻度输入缺陷的细胞的表型,这可能可以用来检测那些 嵌合 的细胞[Gootjes et al 2003]。
Table 4.
12 个与PBD, ZSS相关的PEX 基因的结构
基因 | 外显子 | 基因组 DNA (kb) | cDNA (kb) | 蛋白 (# 氨基酸) |
---|---|---|---|---|
PEX1 | 24 | 41.5 | 3.9 | 1283 |
PXMP3 (PEX2) | 4 | 7.4 | 1.5 | 626 |
PEX3 | 12 | 39 | 1.1 | 373 |
PEX5 | 15 | 18.9 | 1.8 | 602 & 639 |
PEX6 | 17 | 15.1 | 2.4 | 980 |
PEX10 | 6 | 7.8 | 1 | 326 & 345 1 |
PEX12 | 3 | 3.8 | 1.1 | 359 |
PEX13 | 4 | 31.2 | 1.2 | 403 |
PEX14 | 9 | 135.5 | 1.1 | 377 |
PEX16 | 11 | 8.4 | 1 | 346 |
PEX19 | 8 | 5.7 | 0.9 | 299 |
PEX26 | 5 | 10.7 | 0.9 | 305 |
致病性变异. 表 5 到 表 9 总结了5个最常见的PBD, ZSS相关基因的常见致病性变异 (覆盖了 >90% 受累 患者的致病性变异)。
PEX1
目前报道了25个突变[Collins & Gould 1999, Walter et al 2001, Maxwell et al 2002, Steinberg et al 2004]。突变 p.Gly843Asp 和 p.Ile700TryfsTer42 代表了94个PBD患者63%等位基因的突变。有人推测PEX1 基因的p.Ile700TryfsTer42 和 p.Gly843Asp 等位基因位于特殊的单倍体型,可能是奠基者突变 [Collins & Gould 1999],由此推测这些位点并不是反复出现致病性突变的热点。大约 80% 的携带一个或以上PEX1 致病性变异 的个体至少携带有一个常见等位基因。
Maxwell et al [2002] 报道了一个位于 外显子 18的 移码变异 (p.Gly973fs),在他们的 受累 患者的队列研究中,其等位基因频率 接近 10%。在三个主要研究小组的报道中,该致病等位基因 (p.Gly973fs)的概率只有3.7%,但是这些研究中有 21% 的致病等位基因未被明确,因此如果其他小组只检测p.Gly843Asp 和p.Ile700TryfsTer42,致病性变异 (p.Gly973fs) 可能被错过。没有发现其他常见的PEX1 致病性变异。
最近,2个PEX1 启动子区 的序列突变被发现 (c.-137T>C 和 c.-53C>G),体外研究表明一个变异能增加 PEX1 表达,另一个能减少 PEX1 表达,当串联出现时,他们彼此消除对方的效果。作者假设这些启动子区的变异能够调控PEX1 致病性变异的轻重 [Maxwell et al 2005]。
Table 5.
挑选的PEX1 致病性变异
DNA 核苷酸变异 | 预测的蛋白变异 (别名 1) | 参考序列 |
---|---|---|
c.-137T>C 2 | -- | NM_000466 NP_000457 |
c.-53C>G 2 | -- | |
c.2097_2098insT | p.Ile700TyrfsTer42 3 (p.Ile700fs) | |
c.2528G>A | p.Gly843Asp 3 | |
c.2916delA | p.Gly973AlafsTer16 (p.Gly973fs) |
突变类型注释:表格中的突变由作者提供。GeneReviews 的工作人员没有独立验证这些突变的分类。
术语的注释:GeneReviews 采用人类基因组变异协会的标准命名方法 (varnomen
- .hgvs.org )。命名法的解释见Quick Reference 。- 1.
与目前命名方法不符的变异命名。
- 2.
与 基因 表达的改变有关 [Maxwell et al 2005]
- 3.
大约 80% 的携带有 PEX1 致病性变异 的个体至少有这两个常见变异中的一个 [Collins & Gould 1999, Walter et al 2001, Maxwell et al 2002]。
PEX6
没有常见致病性变异。已经报道的最大的 受累的患者的队列(N=13)中,临床表现严重,70%的致病变异是移码/无义突变,10%是小的非移码 缺失 [Zhang et al 1999]。
Table 6.
挑选的 PEX6 致病性变异
DNA 核苷酸变异 (别名 1) | 预测的蛋白变异 | 参考序列 |
---|---|---|
c.1715C>T | p.Thr572Ile | NM_000287 NP_000278 |
c.2094+2T>C (IVS10+2T>C) | -- | |
c.2426C>T | p.Ala809Val | |
c.2534T>C | p.Ile845Thr |
突变类型注释:表格中的突变由作者提供。GeneReviews 的工作人员没有独立验证这些突变的分类。
术语的注释:GeneReviews 采用人类基因组变异协会的标准命名方法 (varnomen
- .hgvs.org )。命名法的解释见Quick Reference 。- 1.
- 与
目前命名方法不符的变异命名。
PEX26
在最初报道的8名患者中,发现了7个PEX26 基因的致病性变异。所有报道的突变发生在2和3号外显子 [Matsumoto et al 2003]。两个不相关的ZS患者都是 p.Gly89Arg 纯合性 突变的携带者,另两个不相关的NALD患者都是 p.Arg98Trp纯合突变的携带者。两个 IRD 患者是复合杂合突变 p.[Arg98Trp]+[Leu85fs] 和 p.[Met1Thr]+[Leu45Pro]的携带者。另一个ZS患者携带 p.Leu12ProfsTer103的纯合突变。第四个 ZS患者没有PEX26 RNA,但是未发现其 基因组的 变异。近期研究在5名患者中发现了致病性变异,其中2名患者各有一个致病性等位基因 在外显子2和3的区域之外 [Steinberg et al 2004]。[Weller et al [2005] 报道了十名患者的PEX26 致病性变异,包括Kennedy Krieger 研究所以前通过互补研究确诊的病人 (表 2)。
Table 7.
挑选的 PEX26 致病性变异
DNA 核苷酸变异 (别名 1) | 预测的蛋白变异 (别名 1) | 参考序列 |
---|---|---|
c.2T>C | p.Met1Thr | NM_001127649 NP_001121121 |
c.34dupC (Nt35insC) | p.Leu12ProfsTer103 | |
c.134T>C | p.Leu45Pro | |
c.254dupT | p.Cys86ValfsTer29 (Leu85fs) | |
c.265G>A | p.Gly89Arg | |
c.292C>T | p.Arg98Trp |
突变类型注释:表格中的突变由作者提供。GeneReviews 的工作人员没有独立验证这些突变的分类。
术语的注释:GeneReviews 采用人类基因组变异协会的标准命名方法 (varnomen
- .hgvs.org )。命名法的解释见Quick Reference 。- 1.
- 与
目前命名方法不符的变异命名。
PEX10
大多数已报道的致病性变异是在ZS患者中发现的,这些患者有移码和 无义 突变 [Okumoto et al 1998a, Warren et al 1998, Warren et al 2000]。致病性变异 c.814_815delCT 是一个常见的致病性 等位基因,特别在日本人群中,可能由一个祖先单倍体型导致 [Shimozawa et al 2003].
Table 8.
挑选的 PEX10 致病性变异
DNA 核苷酸变异 | 预测的蛋白变异 | 参考序列 |
---|---|---|
c.814_815delCT | p.Leu271ValfsTer66 (L271fs) | NM_002617 NP_002608 |
突变类型注释:表格中的突变由作者提供。GeneReviews 的工作人员没有独立验证这些突变的分类。
术语的注释:GeneReviews 采用人类基因组变异协会的标准命名方法 (varnomen
- .hgvs.org )。命名法的解释见Quick Reference 。- 1.
目前命名方法不符的变异命名。
PEX12
在文献报道的10个患者中,只有一个患者的两个等位基因上都有PEX12 的致病性 错义 突变 [Chang et al 1997, Chang & Gould 1998, Okumoto et al 1998b]。大部分人有 无义 /移码/异常 剪接 突变,并且有严重的临床表型。一个以IRD为 表型 的患者的 基因组 变异预测后果很严重 (移码和异常剪接),但是由于翻译的起始位点在起始子ATG的下游,产生一个有部分功能的蛋白,因此表现为较轻的IRD表型。
Table 9.
挑选的 PEX12 致病性变异
DNA 核苷酸变异 | 预测的蛋白变异 | 参考序列 |
---|---|---|
c.959C>T | p.Ser320Phe | NM_000286 NP_000277 |
突变类型注释:表格中的突变由作者提供。GeneReviews 的工作人员没有独立验证这些突变的分类。
术语的注释:GeneReviews 采用人类基因组变异协会的标准命名方法 (varnomen
- .hgvs.org )。命名法的解释见Quick Reference 。
References
Literature Cited
- Agne B, Meindl NM, Niederhoff K, Einwachter H, Rehling P, Sickmann A, Meyer HE, Girzalsky W, Kunau WH. Pex8p: an intraperoxisomal organizer of the peroxisomal import machinery. Mol Cell. 2003;11:635 - 46. [PubMed: 12667447]
- Akiyama N, Ghaedi K, Fujiki Y. A novel pex2 mutant: catalase-deficient but temperature-sensitive PTS1 and PTS2 import. Biochem Biophys Res Commun. 2002;293:1523 - 9. [PubMed: 12054689]
- Baas JC, van de Laar R, Dorland L, Duran M, Berger R, Poll-The BT, de Koning TJ. Plasma pipecolic acid is frequently elevated in non-peroxisomal disease. J Inherit Metab Dis. 2002;25:699 - 701. [PubMed: 12705501]
- Barkovich AJ, Peck WW. MR of Zellweger syndrome. AJNR Am J Neuroradiol. 1997;18:1163 - 70. [PubMed: 9194444]
- Carey WF, Poulos A, Sharp P, Nelson PV, Robertson EF, Hughes JL, Gill A. Pitfalls in the prenatal diagnosis of peroxisomal beta-oxidation defects by chorionic villus sampling. Prenat Diagn. 1994;14:813 - 9. [PubMed: 7845889]
- Chang CC, Gould SJ. Phenotype-genotype relationships in complementation group 3 of the peroxisome-biogenesis disorders. Am J Hum Genet. 1998;63:1294 - 306. [PMC free article: PMC1377540] [PubMed: 9792857]
- Chang CC, Lee WH, Moser H, Valle D, Gould SJ. Isolation of the human PEX12 gene, mutated in group 3 of the peroxisome biogenesis disorders. Nat Genet. 1997;15:385 - 8. [PubMed: 9090384]
- Collins CS, Gould SJ. Identification of a common PEX1 mutation in Zellweger syndrome. Hum Mutat. 1999;14:45 - 53. [PubMed: 10447258]
- Collins CS, Kalish JE, Morrell JC, McCaffery JM, Gould SJ. The peroxisome biogenesis factors pex4p, pex22p, pex1p, and pex6p act in the terminal steps of peroxisomal matrix protein import. Mol Cell Biol. 2000;20:7516 - 26. [PMC free article: PMC86304] [PubMed: 11003648]
- Corzo D, Gibson W, Johnson K, Mitchell G, LePage G, Cox GF, Casey R, Zeiss C, Tyson H, Cutting GR, Raymond GV, Smith KD, Watkins PA, Moser AB, Moser HW, Steinberg SJ. Contiguous deletion of the X-linked adrenoleukodystrophy gene (ABCD1) and DXS1357E: a novel neonatal phenotype similar to peroxisomal biogenesis disorders. Am J Hum Genet. 2002;70:1520 - 31. [PMC free article: PMC419992] [PubMed: 11992258]
- Depreter M, Espeel M, Roels F. Human peroxisomal disorders. Microsc Res Tech. 2003;61:203 - 23. [PubMed: 12740827]
- Ghaedi K, Honsho M, Shimozawa N, Suzuki Y, Kondo N, Fujiki Y. PEX3 is the causal gene responsible for peroxisome membrane assembly-defective Zellweger syndrome of complementation group G. Am J Hum Genet. 2000;67:976 - 81. [PMC free article: PMC1287899] [PubMed: 10968777]
- Ebberink MS, Mooijer PA, Gootjes J, Koster J, Wanders RJ, Waterham HR. Genetic classification and mutational spectrum of more than 600 patients with a Zellweger syndrome spectrum disorder. Hum Mutat. 2011;32:59 - 69. [PubMed: 21031596]
- Gootjes J, Mooijer PA, Dekker C, Barth PG, Poll-The BT, Waterham HR, Wanders RJ. Biochemical markers predicting survival in peroxisome biogenesis disorders. Neurology. 2002;59:1746 - 9. [PubMed: 12473763]
- Gootjes J, Mandel H, Mooijer PA, Roels F, Waterham HR, Wanders RJ. Resolution of the molecular defect in a patient with peroxisomal mosaicism in the liver. Adv Exp Med Biol. 2003;544:107 - 11. [PubMed: 14713221]
- Gootjes J, Schmohl F, Mooijer PA, Dekker C, Mandel H, Topcu M, Huemer M, Von Schutz M, Marquardt T, Smeitink JA, Waterham HR, Wanders RJ. Identification of the molecular defect in patients with peroxisomal mosaicism using a novel method involving culturing of cells at 40 degrees C: implications for other inborn errors of metabolism. Hum Mutat. 2004;24:130 - 9. [PubMed: 15241794]
- Gould SJ, Raymond GV, Valle D. The peroxisome biogenesis disorders. In: Scriver CR, Beaudet AL, Sly WS, Valle D, eds. The Metabolic and Molecular Bases of Inherited Disease. 8 ed. New York, NY: McGraw-Hill; 2001:3181-218.
- Gray RG, Green A, Cole T, Davidson V, Giles M, Schutgens RB, Wanders RJ. A misdiagnosis of X-linked adrenoleukodystrophy in cultured chorionic villus cells by the measurement of very long chain fatty acids. Prenat Diagn. 1995;15:486 - 90. [PubMed: 7644440]
- Imamura A, Shimozawa N, Suzuki Y, Zhang Z, Tsukamoto T, Fujiki Y, Orii T, Osumi T, Wanders RJ, Kondo N. Temperature-sensitive mutation of PEX6 in peroxisome biogenesis disorders in complementation group C (CG-C): comparative study of PEX6 and PEX1. Pediatr Res. 2000;48:541 - 5. [PubMed: 11004248]
- Imamura A, Tamura S, Shimozawa N, Suzuki Y, Zhang Z, Tsukamoto T, Orii T, Kondo N, Osumi T, Fujiki Y. Temperature-sensitive mutation in PEX1 moderates the phenotypes of peroxisome deficiency disorders. Hum Mol Genet. 1998;7:2089 - 94. [PubMed: 9817926]
- Ito R, Huang Y, Yao C, Shimozawa N, Suzuki Y, Kondo N, Imanaka T, Usuda N, Ito M. Temperature-sensitive phenotype of Chinese hamster ovary cells defective in PEX5 gene. Biochem Biophys Res Commun. 2001;288:321 - 7. [PubMed: 11606046]
- Lambert SR, Kriss A, Taylor D, Coffey R, Pembrey M. Follow-up and diagnostic reappraisal of 75 patients with Leber's congenital amaurosis. Am J Ophthalmol. 1989;107:624 - 31. [PubMed: 2658617]
- Lyons CJ, Castano G, McCormick AQ, Applegarth D. Leopard spot retinal pigmentation in infancy indicating a peroxisomal disorder. Br J Ophthalmol. 2004;88:191 - 2. [PMC free article: PMC1772012] [PubMed: 14736770]
- Martinez M. Restoring the DHA levels in the brains of Zellweger patients. J Mol Neurosci. 2001;16:309 - 16. [PubMed: 11478386]
- Matsumoto N, Tamura S, Furuki S, Miyata N, Moser A, Shimozawa N, Moser HW, Suzuki Y, Kondo N, Fujiki Y. Mutations in Novel Peroxin Gene PEX26 That Cause Peroxisome-Biogenesis Disorders of Complementation Group 8 Provide a Genotype-Phenotype Correlation. Am J Hum Genet. 2003;73:233 - 46. [PMC free article: PMC1180364] [PubMed: 12851857]
- Maxwell MA, Allen T, Solly PB, Svingen T, Paton BC, Crane DI. Novel PEX1 mutations and genotype-phenotype correlations in Australasian peroxisome biogenesis disorder patients. Hum Mutat. 2002;20:342 - 51. [PubMed: 12402331]
- Maxwell MA, Leane PB, Paton BC, Crane DI. Novel PEX1 coding mutations and 5' UTR regulatory polymorphisms. Hum Mutat. 2005;26:279. [PubMed: 16088892]
- Michelakakis HM, Zafeiriou DI, Moraitou MS, Gootjes J, Wanders RJ. PEX1 deficiency presenting as Leber congenital amaurosis. Pediatr Neurol. 2004;31:146 - 9. [PubMed: 15301838]
- Moser AB, Rasmussen M, Naidu S, Watkins PA, McGuinness M, Hajra AK, Chen G, Raymond G, Liu A, Gordon D. Phenotype of patients with peroxisomal disorders subdivided into sixteen complementation groups. J Pediatr. 1995;127:13 - 22. [PubMed: 7541833]
- Moser HW. Genotype-phenotype correlations in disorders of peroxisome biogenesis. Mol Genet Metab. 1999;68:316 - 27. [PubMed: 10527683]
- Noguer MT, Martinez M. Visual follow-up in peroxisomal-disorder patients treated with docosahexaenoic Acid ethyl ester. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2010;51:2277 - 85. [PubMed: 19933185]
- Okumoto K, Itoh R, Shimozawa N, Suzuki Y, Tamura S, Kondo N, Fujiki Y. Mutations in PEX10 is the cause of Zellweger peroxisome deficiency syndrome of complementation group B. Hum Mol Genet. 1998a;7:1399 - 405. [PubMed: 9700193]
- Okumoto K, Shimozawa N, Kawai A, Tamura S, Tsukamoto T, Osumi T, Moser H, Wanders RJ, Suzuki Y, Kondo N, Fujiki Y. PEX12, the pathogenic gene of group III Zellweger syndrome: cDNA cloning by functional complementation on a CHO cell mutant, patient analysis, and characterization of PEX12p. Mol Cell Biol. 1998b;18:4324 - 36. [PMC free article: PMC109016] [PubMed: 9632816]
- Paker AM, Sunness JS, Brereton NH, Speedie LJ, Albanna L, Dharmaraj S, Moser AB, Jones RO, Raymond GV. Docosahexaenoic acid therapy in peroxisomal diseases: results of a double-blind, randomized trial. Neurology. 2010;75:826 - 30. [PMC free article: PMC3013498] [PubMed: 20805528]
- Pineda M, Giros M, Roels F, Espeel M, Ruiz M, Moser A, Moser HW, Wanders RJ, Pavia C, Conill J, Aracil A, Amat L, Pampols T. Diagnosis and follow-up of a case of peroxisomal disorder with peroxisomal mosaicism. J Child Neurol. 1999;14:434 - 9. [PubMed: 10573465]
- Plecko B, Stockler-Ipsiroglu S, Paschke E, Erwa W, Struys EA, Jakobs C. Pipecolic acid elevation in plasma and cerebrospinal fluid of two patients with pyridoxine-dependent epilepsy. Ann Neurol. 2000;48:121 - 5. [PubMed: 10894227]
- Poll-The BT, Gootjes J, Duran M, De Klerk JB, Wenniger-Prick LJ, Admiraal RJ, Waterham HR, Wanders RJ, Barth PG. Peroxisome biogenesis disorders with prolonged survival: phenotypic expression in a cohort of 31 patients. Am J Med Genet A. 2004;126A:333 - 8. [PubMed: 15098231]
- Raas-Rothschild A, Wanders RJ, Mooijer PA, Gootjes J, Waterham HR, Gutman A, Suzuki Y, Shimozawa N, Kondo N, Eshel G, Espeel M, Roels F, Korman SH. A PEX6-defective peroxisomal biogenesis disorder with severe phenotype in an infant, versus mild phenotype resembling Usher syndrome in the affected parents. Am J Hum Genet. 2002;70:1062 - 8. [PMC free article: PMC379104] [PubMed: 11873320]
- Setchell KD, Bragetti P, Zimmer-Nechemias L, Daugherty C, Pelli MA, Vaccaro R, Gentili G, Distrutti E, Dozzini G, Morelli A, et al. Oral bile acid treatment and the patient with Zellweger syndrome. Hepatology. 1992;15:198 - 207. [PubMed: 1735522]
- Shimozawa N, Imamura A, Zhang Z, Suzuki Y, Orii T, Tsukamoto T, Osumi T, Fujiki Y, Wanders RJ, Besley G, Kondo N. Defective PEX gene products correlate with the protein import, biochemical abnormalities, and phenotypic heterogeneity in peroxisome biogenesis disorders. J Med Genet. 1999a;36:779 - 81. [PMC free article: PMC1734244] [PubMed: 10528859]
- Shimozawa N, Nagase T, Takemoto Y, Ohura T, Suzuki Y, Kondo N. Genetic heterogeneity of peroxisome biogenesis disorders among Japanese patients: Evidence for a founder haplotype for the most common PEX10 gene mutation. Am J Med Genet. 2003;120A:40 - 3. [PubMed: 12794690]
- Shimozawa N, Suzuki Y, Zhang Z, Imamura A, Toyama R, Mukai S, Fujiki Y, Tsukamoto T, Osumi T, Orii T, Wanders RJ, Kondo N. Nonsense and temperature-sensitive mutations in PEX13 are the cause of complementation group H of peroxisome biogenesis disorders. Hum Mol Genet. 1999b;8:1077 - 83. [PubMed: 10332040]
- Shimozawa N, Tsukamoto T, Nagase T, Takemoto Y, Koyama N, Suzuki Y, Komori M, Osumi T, Jeannette G, Wanders RJ, Kondo N. Identification of a new complementation group of the peroxisome biogenesis disorders and PEX14 as the mutated gene. Hum Mutat. 2004;23:552 - 8. [PubMed: 15146459]
- Shimozawa N, Zhang Z, Imamura A, Suzuki Y, Fujiki Y, Tsukamoto T, Osumi T, Aubourg P, Wanders RJ, Kondo N. Molecular mechanism of detectable catalase-containing particles, peroxisomes, in fibroblasts from a PEX2-defective patient. Biochem Biophys Res Commun. 2000;268:31 - 5. [PubMed: 10652207]
- Steinberg S, Chen L, Wei L, Moser A, Moser H, Cutting G, Braverman N. The PEX Gene Screen: molecular diagnosis of peroxisome biogenesis disorders in the Zellweger syndrome spectrum. Mol Genet Metab. 2004;83:252 - 63. [PubMed: 15542397]
- Steinberg S, Katsanis S, Moser A, Cutting G. Biochemical analysis of cultured chorionic villi for the prenatal diagnosis of peroxisomal disorders: biochemical thresholds and molecular sensitivity for maternal cell contamination detection. J Med Genet. 2005;42:38 - 44. [PMC free article: PMC1735906] [PubMed: 15635073]
- Steinberg SJ, Elcioglu N, Slade CM, Sankaralingam A, Dennis N, Mohammed SN, Fensom AH. Peroxisomal disorders: clinical and biochemical studies in 15 children and prenatal diagnosis in 7 families. Am J Med Genet. 1999;85:502 - 10. [PubMed: 10405451]
- Stellaard F, Kleijer WJ, Wanders RJ, Schutgens RB, Jakobs C. Bile acids in amniotic fluid: promising metabolites for the prenatal diagnosis of peroxisomal disorders. J Inherit Metab Dis. 1991;14:353 - 6. [PubMed: 1770790]
- ter Rahe BS, Majoie CB, Akkerman EM, den Heeten GJ, Poll-The BT, Barth PG. Peroxisomal biogenesis disorder: comparison of conventional MR imaging with diffusion-weighted and diffusion-tensor imaging findings. Am J Neuroradiol. 2004;25:1022 - 7. [PubMed: 15205141]
- Walter C, Gootjes J, Mooijer PA, Portsteffen H, Klein C, Waterham HR, Barth PG, Epplen JT, Kunau WH, Wanders RJ, Dodt G. Disorders of peroxisome biogenesis due to mutations in PEX1: phenotypes and PEX1 protein levels. Am J Hum Genet. 2001;69:35 - 48. [PMC free article: PMC1226046] [PubMed: 11389485]
- Wanders RJ, Dekker C, Ofman R, Schutgens RB, Mooijer P. Immunoblot analysis of peroxisomal proteins in liver and fibroblasts from patients. J Inherit Metab Dis. 1995;18 Suppl 1:101 - 12. [PubMed: 9053545]
- Warren DS, Morrell JC, Moser HW, Valle D, Gould SJ. Identification of PEX10, the gene defective in complementation group 7 of the peroxisome-biogenesis disorders. Am J Hum Genet. 1998;63:347 - 59. [PMC free article: PMC1377304] [PubMed: 9683594]
- Warren DS, Wolfe BD, Gould SJ. Phenotype-genotype relationships in PEX10-deficient peroxisome biogenesis disorder patients. Hum Mutat. 2000;15:509 - 21. [PubMed: 10862081]
- Waterham HR, Koster J, van Roermund CWT, Mooyer PAW, Wanders RJA, Loenard JV. A lethal; defect of mitochondrial and peroxisomal fission. N Engl J Med. 2007;356:1736 - 41. [PubMed: 17460227]
- Watkins PA, McGuinness MC, Raymond GV, Hicks BA, Sisk JM, Moser AB, Moser HW. Distinction between peroxisomal bifunctional enzyme and acyl-CoA oxidase deficiencies. Ann Neurol. 1995;38:472 - 7. [PubMed: 7668838]
- Weller S, Cajigas I, Morrell J, Obie C, Steel G, Gould SJ, Valle D. Alternative splicing suggests extended function of PEX26 in peroxisome biogenesis. Am J Hum Genet. 2005;76:987 - 1007. [PMC free article: PMC1196456] [PubMed: 15858711]
- Weller S, Preuss N, Brosius U, Schmitz W, Conzelmann E, Gartner J. Peroxiosme mosaicism in two PBD patients with mild clinical course and identical PEX1 mutations. J Inherit Metab Dis. 2000;23 Suppl 1:247.
- Zhang Z, Suzuki Y, Shimozawa N, Fukuda S, Imamura A, Tsukamoto T, Osumi T, Fujiki Y, Orii T, Wanders RJ, Barth PG, Moser HW, Paton BC, Besley GT, Kondo N. Genomic structure and identification of 11 novel mutations of the PEX6 (peroxisome assembly factor-2) gene in patients with peroxisome biogenesis disorders. Hum Mutat. 1999;13:487 - 96. [PubMed: 10408779]
Suggested Reading
- Mandel H, Korman SH. Phenotypic variability (heterogeneity) of peroxisomal disorders. Adv Exp Med Biol. 2003;544:9 - 30. [PubMed: 14713208]
- Oglesbee D. An overview of peroxisomal biogenesis disorders. Mol Genet Metab. 2005;84:299 - 301. [PubMed: 15875330]
- Shimozawa N, Nagase T, Takemoto Y, Funato M, Kondo N, Suzuki Y. Molecular and neurologic findings of peroxisome biogenesis disorders. J Child Neurol. 2005;20:326 - 9. [PubMed: 15921234]
- Wanders RJ. Metabolic and molecular basis of peroxisomal disorders: a review. Am J Med Genet A. 2004;126A:355 - 75. [PubMed: 15098234]
- Wanders RJ, Waterham HR. Peroxisomal disorders I: biochemistry and genetics of peroxisome biogenesis disorders. Clin Genet. 2005;67:107 - 33. [PubMed: 15679822]
- Weller S, Gould SJ, Valle D. Peroxisome biogenesis disorders. Annu Rev Genomics Hum Genet. 2003;4:165 - 211. [PubMed: 14527301]
Chapter Notes
Author History
Nancy E Braverman, MS, MD (2003 – present)
Ann B Moser, BA (2003 – present)
Hugo W Moser, MD (2003 – 2007*)
Gerald V Raymond, MD (2003 – present)
Steven J Steinberg, PhD (2003 – present)
*Hugo W Moser, MD was Professor of Neurology and Pediatrics at Johns Hopkins University School of Medicine and former Director of the Kennedy Krieger Institute in Baltimore. He was a world-renowned expert in the field of neurogenetics. He was best known for his leadership role in understanding, diagnosing, and treating adrenoleukodystrophy (ALD). Dr. Moser died of cancer on January 20, 2007 at age 82. He will be greatly missed by his family, friends, colleagues, and patients.
Revision History
- 10 May 2012 (cd) Revision: to clarify that prenatal testing using biochemical methods is possible
- 18 January 2011 (me) Comprehensive update posted live
- 26 April 2006 (me) Comprehensive update posted to live Web site
- 1 October 2004 (sjs) Revision
- 12 December 2003 (me) Review posted to live Web site
- 1 August 2003 (sjs) Original submission